一、荧光原位杂交(FISH) 是一种简单、敏感、而容易操作的方法,结果迅速,并能在同一标本上检测多个不同的基因,可应用于细胞培养、染色体分裂像、冰冻切片和石蜡切片。 FISH技术是利用特异的DNA探针,标记了生物素,地高辛、或荧光素,对检测细胞进行DNA-DNA原位杂交,并用荧光法显示。 (FISH)实验步骤 试剂配制: (1)变性液(70%甲酰胺 + 2×SSC,pH7.0):4ml 20×SSC;8ml蒸馏水;28ml甲酰胺。每次新鲜配制。 (2)杂交后洗涤液: 20×SSC 4ml;蒸馏水16ml;甲酰胺20ml。每次新鲜配制。调节pH前升至室温。
1、用硅化玻片,石蜡切片,60℃烤片过夜。二甲苯脱蜡至酒精,斜置切片,空气中干燥。 2、蛋白酶处理: 1)每个染色缸40ml蛋白酶K消化溶液,配制方法如下:2×SSC 40ml倒人Facal管,在水浴槽中预热。将消化酶液加入管内,摇动直到酶溶解。 2) 37℃水浴槽中预热染色缸和蛋白酶K溶液。37℃孵育20min。 3) 2×SSC在室温下漂洗切片3次,每次1min。 4)梯度酒精脱水(-20℃预冷),空气中干燥。 3、变性: 1)每一个立式染色缸配制40ml变性溶液; 2)78℃水浴槽中平衡预热混合液染色缸; 3)78℃孵育8min; 4) 即移入-20℃预冷70%酒精的染色缸内2min,再依次移入80%、90%和100%的-20℃预冷酒精内,每缸2min; 5)空气干燥。 4、杂交: 1)准备探针; 2)取一个较大的湿盒,交叉放置切片; 3)滴10μl探针在切片的组织上,加盖玻片; 4)盖上湿盒盖,37℃孵育12h~16h。 杂交后水洗: 5)镊子小心去除盖玻片; 6)43℃预热杂交后水洗溶液40ml水洗切片15min; 7)2×SSC(37℃)洗两次,每次10min; 8)切片放人染色缸的1×PBS内待检测,勿使切片干燥。 检测: 9)从1×PBS中取出切片,除去过多的水分,避免标本干燥。把切片放入湿盒内,同时处理4张切片。 10)每张切片使用30μl~60μl罗丹明抗-地高辛抗体或FITC卵白素,室温下孵育20min; 11)去掉塑料盖膜,把切片放入含1×PBS的染色缸。1×PBS室温下洗3次,每次2min。 扩增: 12)从1×PBS中取出切片,斜置切片使液体排出; 13)每张切片滴30μl~60μl抗-卵白素抗体,加塑料盖膜,室温孵育20min; 14)去掉塑料盖膜,把切片放人含1×PBS的染色缸。1×PBS室温下洗3次,每次2min; 15)从1×PBS中取出切片,斜置切片使液体排出; 16)每张切片滴30μl~60μl抗-卵白素抗体,加塑料盖膜,室温孵育20min; 17)1×PBS室温下洗3次,每次2min。 5、细胞核染色: 1)张切片加10μl~20μl DAPI,覆盖盖玻片并在室温下孵育2~5ml; 2)尽可能快的在荧光显微镜下观察或封闭盒内保存在-20℃冰箱。切片在染色之后1h内可以在显微镜下观察。 二、用引物介导的原位标记(PRINS) 是PCR和荧光原位杂交(FISH)的结合, PRINS是由未标记的序列特异性寡核苷酸探针与固定在细胞内的靶DNA互补序列,在聚合酶的驱动下,带有标记的脱氧核苷酸(FITC-dUTP或半抗原-dUTP)和dATP、dCTP、dGTP的延伸,依赖标记,新合成的DNA就能直接的或间接的带有FITC,用荧光显微镜观察。 PRINS实验步骤 1、常规脱蜡浸入0.01mol/LPBS; 2、用0.2mol/L盐酸处理5min; 3、蛋白酶K(25μg/m1)消化37℃ 15min; 4、分别用80%,95%和100%酒精脱水,室温干片; 5、加PCR混合液25μL(10mmol/L Tris-HCl,50mmol/L KCl,1.5mmol/L MgCl2,各加200μmol/L dATP,dCTP,dGTP,1.5mmol/L dig-11-dUTP l.5μl,引物250ng,Taq DNA聚合酶2U),加盖片; 6、94℃变性5min后置入65℃湿盒中5min; 7、用0.1×SSC液,65℃洗5min; 8、片于65℃ 10s~20s;用4×SSC-0.1%吐温20液42℃洗5min,2次; 9、经Buffer I液洗后滴加20%羊血清封闭30min; 10、加地高辛抗体复合物(1:500)室温下2h; 11、BufferⅢ液洗5min; 12、用BCIP-NBT显色1h~2h,在镜下控制,终止显色; 13、用中性红或核固红衬染,酒精脱水,二甲苯透明,树脂封片。 |