脂肪染色：　　　　　
苏旦Ⅲ 法
试剂配制：
苏旦Ⅲ 0.1-0.2g，
70% 酒精100 ml
将苏旦Ⅲ置于70%酒精中,加热饱和,在未冷前过滤,静置一夜。
染色步骤：
1. 细胞涂片。
2. 70%酒精固定1分钟。
3. 放入苏旦Ⅲ酒精溶液中20-30分钟。
4. 70%酒精洗去多余的染料。
5. 水洗。
6. 苏木素复染2-5分钟。
7. 1%盐酸酒精分化。
8. 水洗，蓝化,甘油封固。
结果：脂肪桔黄或红色。一般用于确定胞浆内空泡究竟是糖原，水变性还是脂滴。

苏丹Ⅳ（猩红）(Sudan Ⅳ)染色法：
试剂配制：
苏丹Ⅳ1-2克加纯酒精70ml，10%氢氧化钠20ml，蒸馏水10ml，制成混合液，略加热，置37℃温箱中1小时，取出冷却后过滤，12小时后即可使用。此液5天内失效，建议配制70%酒精饱和液。
染色步骤：
1.  细胞涂片。
2. 70%酒精固定1分钟。
3. 放入苏旦Ⅳ酒精溶液中20-30分钟。
4. 70%酒精洗去多余的染料。
5. 水洗。
6. 苏木素复染2-5分钟。
7. 1%盐酸酒精分化。
8. 水洗，蓝化,甘油封固。
结果：脂肪呈猩红色。

油红染色法：
试剂配制：
油红O 0.5g，异丙醇100ml，配成饱和液，长期保存备用。
油红稀释液的配制：取油红饱和液6毫升，加蒸馏水4毫升，静置5-10分钟后过滤后使用。
染色步骤：
1.细胞涂片。
2. 70%酒精固定1分钟。
3、蒸馏水洗。
4、油红稀释液染10-15分钟，避光、密封。
5、60%乙醇镜下分化至间质清晰。
6、水洗。
7、Marry氏苏木素复染核。
8、水洗。
9、甘油或甘油明胶封片。
结果：脂肪呈鲜红色，细胞核呈蓝色，间质无色。

糖原染色
过碘酸-Schiff（PAS）染色法
试剂配制：
碱性品红 1 g ，活性炭 2 g ，当量盐酸 20 ml ，偏重亚硫酸钠 1.5 g
Schiff试剂配制:
1. 碱性品红1g，放入200毫升蒸馏水中，煮沸，搅拌，充分溶解。
2. 冷却至50℃时过滤，滤液中加入当量盐酸20毫升。
3. 加偏重亚硫酸钠 1.5 g，置于暗处过夜。
4. 加活性2 g，摇晃，过滤，以无色为****。棕色瓶，4℃冰箱保存。
染色步骤:
1. 细胞涂片，95%酒精固定60分钟以上。
2. 1%过碘酸水溶液5-10分钟。
3. 蒸馏水洗多次。
4. Schiff液10-15分钟。
5. 0.5%偏重亚硫酸钠 （钾）水溶液洗2次（1-2分钟）
6. 流水冲洗10分钟。
7. 苏木素复染。（1-2分钟）
8. 酒精脱水，二甲苯透明，树胶封固。
结果：糖原红色。
 注意：1.阴性对照片用淀粉酶消化处理。
       2.糖原容易水解，取材标本最好新鲜，不要经过水洗。
       3.固定液用中性福尔马林为佳。
       4.如Schiff液发红, 再加入少量偏重亚硫酸钠,使液体颜色变清后又可使用.

粘液染色
阿尔辛蓝过碘酸雪夫（AB-PAS）染色法
试剂配制：
爱先蓝液： 爱先蓝8GX 1g ，蒸馏水 97 ml，冰醋酸 3 ml
核固红液: 核固红 0.1g，硫酸铝 5g，蒸馏水  97ml
碱性品红 1 g ，活性炭 2 g ，当量盐酸 20 ml ，偏重亚硫酸钠 1.5 g
Schiff试剂配制:
1. 碱性品红1g，放入200ml蒸馏水中，煮沸，搅拌，充分溶解。
2. 冷却至50℃时过滤，滤液中加入当量盐酸20ml。
3. 加偏重亚硫酸钠 1.5 g，置于暗处过夜。
4. 加活性2 g，摇晃，过滤，以无色为****。棕色瓶，4℃冰箱保存。
染色步骤:
1. 细胞涂片，95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3、3%冰醋酸浸5分钟
4. 爱先蓝液染10～20分钟
5. 蒸馏水洗
6. 1%过碘酸水溶液5-10分钟。
7. 蒸馏水洗多次。
8. Schiff液10-15分钟。
9. 自来水中浸10分钟（经常换水）。
10. 酒精脱水，二甲苯透明，树胶封固。
结果：中性粘液呈红色，酸性粘液物质呈蓝色。中性与酸性粘液的混合物质呈紫红色。

 Southgate胭脂红染色
试剂配制：
1．Southgate贮备液：胭脂红 1g，无水酒精 50ml，蒸馏水 50ml升，氢氧化铝 1 g，无水氯化铝 0.5 g
先将无水酒精和蒸馏水1：1混合，依次加入试剂，搅拌，水浴中煮沸3分钟，冷至室温过滤，并用50%酒精加至总量100ml，磨纱瓶冰箱保存。
2．Southgate稀释液：用前取10ml贮存液加蒸馏水40ml。
染色步骤:
1. 细胞涂片，95%酒精固定60分钟以上。
2. 苏木素染5～10分钟
3. 水洗，1%盐酸酒精分化
4. 水洗，蓝化
5、蒸馏水洗
6. Southgate稀释液染30分钟
7. 水洗
8. 95%酒精洗二次
9. 无水酒精脱水,透明,封固
结果：酸性粘液呈红色。

淀粉样蛋白
甲基紫法（ Jurgens，1875）
试剂配制：
（1）1%甲基紫水溶液：甲基紫（methyl violet）1g，蒸馏水加至100ml
（2）1%蜡酸水溶液：冰醋酸1ml，蒸馏水99ml
操作方法：
1. 细胞涂片，95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3、1%甲基紫水溶液染3-5分钟。
4、水洗，在镜下观察。
5、1%蜡酸水溶液分化，直至见淀粉样蛋白呈紫红色或红色，胞核呈蓝紫色。
6、流水稍冲洗。
用阿拉伯树胶封片。或把涂片自然凉干后，用中性树胶封固。
结果：淀粉样蛋白呈紫红色至红色。
注意事项：
1、如无甲基紫，也可用结晶紫代替，同样可获得异色反应。
2、染好后的涂片不能用酒精脱水，因为此染料溶于酒精而立即脱色。
3、染好后的涂片也不宜用甘油明胶封盖。

二、甲醇刚果红法（改良的Highman）
（1）甲醇刚果红液：刚果红（congo red）0.5g，甲醇80ml，甘油20ml
（2）碱性酒精分化液：氢氧化钾0.2g，80%酒精100ml
操作方法：
1. 细胞涂片，95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3. 甲醇刚果红染液染10～20分钟
4. 用碱性乙醇分化液分化数秒
5. 水洗
6. 苏木素复染2分钟
7. 水洗数分钟
8. 脱水,透明,封固
结果：淀粉样物呈桔红色。

含铁血黄素
 普鲁士蓝反应：
试剂配制：
1. 2%亚铁氢化钾水溶液:   亚铁氢化钾 2 g ，蒸馏水 100 ml
2. 2%盐酸水溶液:   盐酸 2 ml，蒸馏水 98 ml
3. 0.1%沙红(safranine)溶液: 沙红 0.1 g， 蒸馏水 100 ml
   染色步骤:
1. 细胞涂片，95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3. 取2%亚铁氢化钾水溶液和2%盐酸水溶液等份混合,滴在涂片上，
   10～20分钟
4. 蒸馏水洗
5. 核复染
6. 水洗,脱水,透明,封固
结果：含铁血黄素呈蓝色。